免疫學(xué)實驗已經(jīng)成為蛋白質(zhì)科學(xué)研究領(lǐng)域難以替代的重要實驗方法。通過將“可以與待測分子結(jié)合的特異性抗體”和“易于被檢測到的標(biāo)記物”二者相偶聯(lián)的方法,研究人員已經(jīng)獲得了高效且特異檢測樣本中靶標(biāo)的有效工具。而且隨著檢測手段的更新迭代,越來越多的標(biāo)記物類型也花樣翻新,大有“亂花漸欲迷人眼”之勢。那么,如何才能在種類繁多的抗體偶聯(lián)物中找到合適自己的那一個呢?今天就讓我們?yōu)槟銚荛_迷霧,一探究竟。
其實,作為標(biāo)記的偶聯(lián)物種類雖多,但其實最常用偶聯(lián)物只有3個大類,即:酶標(biāo)記、熒光標(biāo)記和生物素標(biāo)記。
酶標(biāo)記的首選毫無疑問是辣根過氧化物酶 (HRP) 。HRP能通過催化有過氧化氫參與的一系列氧化還原反應(yīng)并釋放信號,而被廣泛應(yīng)用于免疫印跡 (WB), 酶聯(lián)免疫吸附 (ELISA), 以及免疫組織化學(xué) (IHC) 等實驗中。由于HRP自身穩(wěn)定性強且催化效率高,因此可以通過很簡單的操作,有效放大中低豐度靶標(biāo)的信號,因此能夠適應(yīng)大多數(shù)檢測情境。酶標(biāo)記中的另外一種是堿性磷酸酶 (AP) 標(biāo)記,常常是通過催化磷酸酯底物的去磷酸化顯色反應(yīng)而達到檢測目的。與HRP相比,AP標(biāo)記過程中酶活性損失更大、穩(wěn)定性低且反應(yīng)時間長,因此對制備和檢測操作都提出了較高要求。但是得益于AP獨特的最適pH和催化穩(wěn)定性,這使得AP在堿性條件或?qū)Y(jié)果穩(wěn)定性要求苛刻的特殊場合下,具有比HRP更好的工作性能。
HRP標(biāo)記往往是樣本單靶點檢測的首選,但當(dāng)需要對同一樣本中的多個靶點進行多通道檢測時,熒光標(biāo)記抗體則提供了一種更好的選擇。各類熒光標(biāo)記,如:AF系列、Cy系列、FITC、羅丹明等為研究人員們提供了極大地選擇空間,因此被廣泛應(yīng)用于免疫熒光染色 (IF), 流式細(xì)胞術(shù) (FC), 和熒光免疫印跡 (FWB)實驗中。選擇熒光標(biāo)記時,熒光相對強度和光譜分離度的選擇最為重要。由于激光光源、檢測設(shè)備等的不同,不同的熒光標(biāo)記在不同的設(shè)備上具有不同的熒光強度。因此,選擇熒光標(biāo)記物時,需要結(jié)合實驗室設(shè)備的特點和蛋白豐度,以確保最亮的標(biāo)記物和表達水平最低的蛋白相互組合。此外,“串光”問題會在熒光實驗中帶來非常大的不利影響,并直接影響結(jié)果的可信度。因此,熒光標(biāo)記物發(fā)射光譜應(yīng)盡可能地彼此遠離,以避免鄰近通道間熒光信號的串?dāng)_。如果難以確認(rèn)最佳熒光標(biāo)記的種類,優(yōu)先去嘗試AF488, Cy5, FITC, PE等文獻中最常用到的熒光標(biāo)記通常是較為穩(wěn)妥的選擇。
和熒光與酶標(biāo)記不同,生物素標(biāo)記由于不能直接釋放信號而很少被獨立使用,但是卻常出現(xiàn)在各類免疫學(xué)實驗應(yīng)用場景中。得益于生物素與各類親和素高特異性且強力地結(jié)合,生物素標(biāo)記抗體可以添加在原有的一抗和二抗之間(此時生物素化抗體成為二抗,而原先的二抗被三抗或標(biāo)記的親和素取代),隨后被標(biāo)記親和素和生物素標(biāo)記的結(jié)合,可以使低豐度靶標(biāo)的信號被進一步放大,進而提升檢測的信噪比。因此,當(dāng)我們關(guān)心的靶蛋白豐度過低,以至于傳統(tǒng)的標(biāo)記物難以對其進行有效的檢測時,生物素化抗體往往能力挽狂瀾,成為我們實驗成功的一根救命稻草。如果與時下流行的酪胺信號放大技術(shù) (TSA) 相結(jié)合,生物素化抗體甚至能為我們提供前所未有的清晰而明亮的熒光成像。
好的開始是成功的一半,辛苦實驗的你不需要為選擇標(biāo)記抗體而苦惱。給博奧森一份信任,我們還你的不只是一支好抗體!